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La desestabilización de SAPS3 mediada por AURKA impulsa la evasión de ferropótesis a través de la biosíntesis de 7-desidrocolesterol en cáncer colorrectal.

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Mientras que la inducción de ferropótesis ofrece una prometedora vía para terapias contra el cáncer, su utilidad clínica en cáncer colorrectal (CRC) está limitada por mecanismos intrínsecos de resistencia generalizados. Aquí identificamos a la quinasa Aurora A (AURKA) como un supresor central de ferropótesis al reconfigurar el metabolismo del colesterol. Desde una perspectiva mecánica, AURKA fosforila y desestabiliza su regulador negativo SAPS3 en Ser523/524, liberando la inhibición de AMPK. La AMPK activada inhibe posteriormente la translocación nuclear de SREBP2 y la transcripción de DHCR7, resultando en la acumulación de 7-dehidrocolesterol (7-DHC), un antioxidante lipídico que confiere resistencia a la ferropótesis.

Tanto la inhibición genética como farmacológica de AURKA restauran la sensibilidad a la ferropótesis y potencian la eficacia de la quimioterapia in vitro y en modelos de xenografts derivados del paciente. Clínicamente, el aumento en la expresión de AURKA se correlaciona con un pronóstico pobre y una respuesta reducida a la quimioterapia en pacientes con CRC.

Estos hallazgos delinean un nuevo eje AURKA-SAPS3-AMPK-SREBP2 que conecta el equilibrio del colesterol y la evasión de ferropótesis, posicionando a AURKA como un prometedor objetivo terapéutico para la quimiosensibilización en CRC.

Acceso Abierto ~3,007 palabras · 16 min de lectura

Si bien la inducción de la ferroptosis ofrece una vía prometedora para las terapias contra el cáncer, su utilidad clínica en el cáncer colorrectal (CCR) está limitada por los mecanismos de resistencia intrínseca generalizados. Aquí, identificamos la quinasa Aurora A (AURKA) como un supresor central de la ferroptosis al modificar el metabolismo del colesterol. Mecánicamente, AURKA fosforila e inestabiliza su regulador negativo SAPS3 en Ser523/524, aliviando la supresión de AMPK. La AMPK activada inhibe posteriormente la translocación nuclear de SREBP2 y la transcripción de DHCR7, lo que resulta en la acumulación de 7-deshidrocolesterol (7-DHC), un antioxidante lipídico que confiere resistencia a la ferroptosis. Tanto la inhibición genética como la farmacológica de AURKA restauran la sensibilidad a la ferroptosis y mejoran la eficacia de la quimioterapia in vitro y en modelos de xenoinjertos derivados de pacientes. Clínicamente, la expresión elevada de AURKA se correlaciona con un mal pronóstico y una reducción de la respuesta a la quimioterapia en pacientes con CCR. Estos hallazgos delinean un nuevo eje AURKA-SAPS3-AMPK-SREBP2 que conecta la homeostasis del colesterol y la evasión de la ferroptosis, posicionando a AURKA como un prometedor objetivo terapéutico para la quimiosensibilización en el CCR.

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Todos los datos necesarios para evaluar las conclusiones del artículo se presentan en el artículo y/o en los materiales suplementarios. Los datos brutos están disponibles bajo petición al autor correspondiente. Los datos de secuenciación de ARN se han depositado en el Gene Expression Omnibus con el código de acceso GSE302491. Referencias: Stockwell BR, Friedmann Angeli JP, Bayir H, Bush AI, Conrad M, Dixon SJ, et al. Ferroptosis: A Regulated Cell Death Nexus Linking Metabolism, Redox Biology, and Disease. Cell. 2017;171:273–85. Google Scholar
Dixon SJ, Lemberg KM, Lamprecht MR, Skouta R, Zaitsev EM, Gleason CE, et al. Ferroptosis: an iron-dependent form of nonapoptotic cell death. Cell. 2012;149:1060–72. Google Scholar
Lei G, Zhang Y, Koppula P, Liu X, Zhang J, Lin SH, et al. The role of ferroptosis in ionizing radiation-induced cell death and tumor suppression. Cell Res. 2020;30:146–62. Google Scholar
Conche C, Finkelmeier F, Pesic M, Nicolas AM, Bottger TW, Kennel KB, et al. Combining ferroptosis induction with MDSC blockade renders primary tumours and metastases in liver sensitive to immune checkpoint blockade. Gut. 2023;72:1774–82. Google Scholar
Guo J, Xu B, Han Q, Zhou H, Xia Y, Gong C, et al. Ferroptosis: A Novel Anti-tumor Action for Cisplatin. Cancer Res Treat. 2018;50:445–60. Google Scholar
Friedmann Angeli JP, Krysko DV, Conrad M. Ferroptosis at the crossroads of cancer-acquired drug resistance and immune evasion. Nat Rev Cancer. 2019;19:405–14. Google Scholar
Zhang C, Liu X, Jin S, Chen Y, Guo R. Ferroptosis in cancer therapy: a novel approach to reversing drug resistance. Mol Cancer. 2022;21:47. Google Scholar
Jiang X, Stockwell BR, Conrad M. Ferroptosis: mechanisms, biology and role in disease. Nat Rev Mol Cell Biol. 2021;22:266–82. Google Scholar
Zheng J, Conrad M. The Metabolic Underpinnings of Ferroptosis. Cell Metab. 2020;32:920–37. Google Scholar
Li Y, Ran Q, Duan Q, Jin J, Wang Y, Yu L, et al. 7-Dehydrocholesterol dictates ferroptosis sensitivity. Nature. 2024;626:411–8. Google Scholar
Freitas FP, Alborzinia H, Dos Santos AF, Nepachalovich P, Pedrera L, Zilka O, et al. 7-Dehydrocholesterol is an endogenous suppressor of ferroptosis. Nature. 2024;626:401–10. Google Scholar
Yamada N, Karasawa T, Ito J, Yamamuro D, Morimoto K, Nakamura T, et al. Inhibition of 7-dehydrocholesterol reductase prevents hepatic ferroptosis under an active state of sterol synthesis. Nat Commun. 2024;15:2195. Google Scholar
Siegel RL, Giaquinto AN, Jemal A. Cancer statistics, 2024. CA Cancer J Clin. 2024;74:12–49. Google Scholar
Song M, Huang S, Wu X, Zhao Z, Liu X, Wu C, et al. UBR5 mediates colorectal cancer chemoresistance by attenuating ferroptosis via Lys 11 ubiquitin-dependent stabilization of Smad3-SLC7A11 signaling. Redox Biol. 2024;76:103349. Google Scholar
Zeng K, Li W, Wang Y, Zhang Z, Zhang L, Zhang W, et al. Inhibition of CDK1 Overcomes Oxaliplatin Resistance by Regulating ACSL4-mediated Ferroptosis in Colorectal Cancer. Adv Sci (Weinh). 2023;10:e2301088. Google Scholar
Li SQ, Xu WT, Yin YX, Wei HT, Li KZ, Xie MZ, et al. SNHG4-mediated PTEN destabilization confers oxaliplatin resistance in colorectal cancer cells by inhibiting ferroptosis. Apoptosis. 2024;29:835–48. Google Scholar
Zheng H, Liu J, Cheng Q, Zhang Q, Zhang Y, Jiang L, et al. Targeted activation of ferroptosis in colorectal cancer via LGR4 targeting overcomes acquired drug resistance. Nat Cancer. 2024;5:572–89. Google Scholar
Yang Z, Su W, Zhang Q, Niu L, Feng B, Zhang Y, et al. Lactylation of HDAC1 Confers Resistance to Ferroptosis in Colorectal Cancer. Adv Sci (Weinh). 2025;12:e2408845. Google Scholar
Lin YS, Tsai YC, Li CJ, Wei TT, Wang JL, Lin BW, et al. Overexpression of NUDT16L1 sustains proper function of mitochondria and leads to ferroptosis insensitivity in colorectal cancer. Redox Biol. 2024;77:103358. Google Scholar
Hannak E, Kirkham M, Hyman AA, Oegema K. Aurora-A kinase is required for centrosome maturation in Caenorhabditis elegans. J Cell Biol. 2001;155:1109–16. Google Scholar
Nikonova AS, Astsaturov I, Serebriiskii IG, Dunbrack RL Jr, Golemis EA. Aurora A kinase (AURKA) in normal and pathological cell division. Cell Mol Life Sci. 2013;70:661–87. Google Scholar
Ochi T, Fujiwara H, Suemori K, Azuma T, Yakushijin Y, Hato T, et al. Aurora-A kinase: a novel target of cellular immunotherapy for leukemia. Blood. 2009;113:66–74. Google Scholar
Landen CN Jr, Lin YG, Immaneni A, Deavers MT, Merritt WM, Spannuth WA, et al. Overexpression of the centrosomal protein Aurora-A kinase is associated with poor prognosis in epithelial ovarian cancer patients. Clin Cancer Res. 2007;13:4098–104. Google Scholar
Lo Iacono M, Monica V, Saviozzi S, Ceppi P, Bracco E, Papotti M, et al. Aurora Kinase A expression is associated with lung cancer histological-subtypes and with tumor de-differentiation. J Transl Med. 2011;9:100. Google Scholar
Li D, Zhu J, Firozi PF, Abbruzzese JL, Evans DB, Cleary K, et al. Overexpression of oncogenic STK15/BTAK/Aurora A kinase in human pancreatic cancer. Clin Cancer Res. 2003;9:991–7. Google Scholar
Jeng YM, Peng SY, Lin CY, Hsu HC. Overexpression and amplification of Aurora-A in hepatocellular carcinoma. Clin Cancer Res. 2004;10:2065–71. Google Scholar
Briassouli P, Chan F, Savage K, Reis-Filho JS, Linardopoulos S. Aurora-A regulation of nuclear factor-kappaB signaling by phosphorylation of IkappaBalpha. Cancer Res. 2007;67:1689–95. Google Scholar
Chen X, Du S, Zhang Y, Peng K, Liu L, Wang T, et al. Caspase-mediated AURKA cleavage at Asp(132) is essential for paclitaxel to elicit cell apoptosis. Theranostics. 2024;14:3909–26. Google Scholar
Zheng X, Chi J, Zhi J, Zhang H, Yue D, Zhao J, et al. Aurora-A-mediated phosphorylation of LKB1 compromises LKB1/AMPK signaling axis to facilitate NSCLC growth and migration. Oncogene. 2018;37:502–11. Google Scholar
Wang LH, Xiang J, Yan M, Zhang Y, Zhao Y, Yue CF, et al. The mitotic kinase Aurora-A induces mammary cell migration and breast cancer metastasis by activating the Cofilin-F-actin pathway. Cancer Res. 2010;70:9118–28. Google Scholar
Cammareri P, Scopelliti A, Todaro M, Eterno V, Francescangeli F, Moyer MP, et al. Aurora-a is essential for the tumorigenic capacity and chemoresistance of colorectal cancer stem cells. Cancer Res. 2010;70:4655–65. Google Scholar
Zheng F, Yue C, Li G, He B, Cheng W, Wang X, et al. Nuclear AURKA acquires kinase-independent transactivating function to enhance breast cancer stem cell phenotype. Nat Commun. 2016;7:10180. Google Scholar
Katayama H, Wang J, Treekitkarnmongkol W, Kawai H, Sasai K, Zhang H, et al. Aurora kinase-A inactivates DNA damage-induced apoptosis and spindle assembly checkpoint response functions of p73. Cancer Cell. 2012;21:196–211. Google Scholar
Deng B, Liu F, Chen N, Li X, Lei J, Chen N, et al. AURKA emerges as a vulnerable target for KEAP1-deficient non-small cell lung cancer by activation of asparagine synthesis. Cell Death Dis. 2024;15:233. Google Scholar
Sun H, Wang H, Wang X, Aoki Y, Wang X, Yang Y, et al. Aurora-A/SOX8/FOXK1 signaling axis promotes chemoresistance via suppression of cell senescence and induction of glucose metabolism in ovarian cancer organoids and cells. Theranostics. 2020;10:6928–45. Google Scholar
Cheng A, Zhang P, Wang B, Yang D, Duan X, Jiang Y, et al. Aurora-A mediated phosphorylation of LDHB promotes glycolysis and tumor progression by relieving the substrate-inhibition effect. Nat Commun. 2019;10:5566. Google Scholar
Nguyen TTT, Shang E, Shu C, Kim S, Mela A, Humala N, et al. Aurora kinase A inhibition reverses the Warburg effect and elicits unique metabolic vulnerabilities in glioblastoma. Nat Commun. 2021;12:5203. Google Scholar
Zheng D, Li J, Yan H, Zhang G, Li W, Chu E, et al. Emerging roles of Aurora-A kinase in cancer therapy resistance. Acta Pharm Sin B. 2023;13:2826–43. Google Scholar
Li Y, Xu S, Mihaylova MM, Zheng B, Hou X, Jiang B, et al. AMPK phosphorylates and inhibits SREBP activity to attenuate hepatic steatosis and atherosclerosis in diet-induced insulin-resistant mice. Cell Metab. 2011;13:376–88. Google Scholar
Tang H, Yu R, Liu S, Huwatibieke B, Li Z, Zhang W. Irisin Inhibits Hepatic Cholesterol Synthesis via AMPK-SREBP2 Signaling. EBioMedicine. 2016;6:139–48. Google Scholar
Liu S, Gao Y, Zhang L, Yin Y, Zhang W. Rspo1/Rspo3-LGR4 signaling inhibits hepatic cholesterol synthesis through the AMPKalpha-SREBP2 pathway. FASEB J. 2020;34:14946–59. Google Scholar
Yang Y, Reid MA, Hanse EA, Li H, Li Y, Ruiz BI, et al. SAPS3 subunit of protein phosphatase 6 is an AMPK inhibitor and controls metabolic homeostasis upon dietary challenge in male mice. Nat Commun. 2023;14:1368. Google Scholar
Lei G, Zhuang L, Gan B. Targeting ferroptosis as a vulnerability in cancer. Nat Rev Cancer. 2022;22:381–96. Google Scholar
Nakamura T, Conrad M. Exploiting ferroptosis vulnerabilities in cancer. Nat Cell Biol. 2024;26:1407–19. Google Scholar
Ye Y, Xu L, Zhang L, Zhao P, Cai W, Fu G, et al. Meningioma achieves malignancy and erastin-induced ferroptosis resistance through FOXM1-AURKA-NRF2 axis. Redox Biol. 2024;72:103137. Google Scholar
Chen H, Hu J, Xiong X, Chen H, Lin B, Chen Y, et al. AURKA inhibition induces Ewing’s sarcoma apoptosis and ferroptosis through NPM1/YAP1 axis. Cell Death Dis. 2024;15:99. Google Scholar
Guo Y, Wang H, Wang X, Chen K, Feng L. Enhancing radiotherapy in triple-negative breast cancer with hesperetin-induced ferroptosis via AURKA targeting nanocomposites. J Nanobiotechnology. 2024;22:744. Google Scholar
Bai T, Li M, Liu Y, Qiao Z, Zhang X, Wang Y, et al. The promotion action of AURKA on post-ischemic angiogenesis in diabetes-related limb ischemia. Mol Med. 2023;29:39. Google Scholar
Sun N, Meng F, Zhao J, Li X, Li R, Han J, et al. Aurka deficiency in the intestinal epithelium promotes age-induced obesity via propionate-mediated AKT activation. Int J Biol Sci. 2021;17:1302–14. Google Scholar
Xue L, Qi H, Zhang H, Ding L, Huang Q, Zhao D, et al. Targeting SREBP-2-Regulated Mevalonate Metabolism for Cancer Therapy. Front Oncol. 2020;10:1510. Google Scholar
Liu F, Chen W, Zhang Z, Zeng W, Hu H, Ning S, et al. Targeting Aurora kinase B regulates cholesterol metabolism and enhances chemoimmunotherapy in cholangiocarcinoma. Gut. 2026;75:353–66. Google Scholar
Zeng K, Bastos RN, Barr FA, Gruneberg U. Protein phosphatase 6 regulates mitotic spindle formation by controlling the T-loop phosphorylation state of Aurora A bound to its activator TPX2. J Cell Biol. 2010;191:1315–32. Google Scholar
Sobajima T, Kowalczyk KM, Skylakakis S, Hayward D, Fulcher LJ, Neary C, et al. PP6 regulation of Aurora A-TPX2 limits NDC80 phosphorylation and mitotic spindle size. J Cell Biol. 2023;222:e202205117. Google Scholar
Heo J, Larner JM, Brautigan DL. Protein kinase CK2 phosphorylation of SAPS3 subunit increases PP6 phosphatase activity with Aurora A kinase. Biochem J. 2020;477:431–44. Google Scholar
Tayyar Y, Jubair L, Fallaha S, McMillan NAJ. Critical risk-benefit assessment of the novel anti-cancer aurora a kinase inhibitor alisertib (MLN8237): A comprehensive review of the clinical data. Crit Rev Oncol Hematol. 2017;119:59–65. Google Scholar
O’Connor OA, Ozcan M, Jacobsen ED, Roncero JM, Trotman J, Demeter J, et al. Randomized Phase III Study of Alisertib or Investigator’s Choice (Selected Single Agent) in Patients With Relapsed or Refractory Peripheral T-Cell Lymphoma. J Clin Oncol. 2019;37:613–23. Google Scholar
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Agradecimientos: Este trabajo contó con el apoyo de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (82303923 para MS, 92359302 para WH), el Plan Nacional Clave de Investigación y Desarrollo (2022YFC3401000 para WH), la Fundación de Investigación Básica y Aplicada de Guangdong (2026A1515012961, 2024A1515013156 para M.S., 2021B1515230009 para WH), los Programas Clave Provinciales de Investigación y Desarrollo de Guangdong en el área de "Medicina de precisión y células madre" (2023B1111020005 para WH), el Proyecto de la Fundación de Ciencias Naturales para el Equipo de Jóvenes Destacados de la Provincia de Guangdong (2024B1515040030 para WH), la Fundación de Ciencias Naturales de la Provincia de Fujian (2024J011004 para WH), el Equipo de Alto Nivel en Salud y Medicina de la Provincia de Fujian (XM050005 para WH).
Información del autor
Notas de los autores: Los siguientes autores contribuyeron por igual: Jialing Gao, Weijing Zhang, Lulu Chen.
Autores y afiliaciones: Departamento de Cirugía Gastrointestinal, el Primer Hospital Afiliado, Universidad Sun Yat-Sen, Guangzhou, Guangdong, China: Jialing Gao, Lulu Chen, Shaoqing Huang, Xiaoxue Wu, Weiling He y Mei Song.
Instituto de Medicina de Precisión, el Primer Hospital Afiliado, Universidad Sun Yat-Sen, Guangzhou, Guangdong, China: Jialing Gao, Lulu Chen, Xiaoxue Wu y Mei Song.
Departamento de Radiología, Laboratorio Estatal Clave de Oncología en el Sur de China, Centro de Investigación Clínica Provincial de Guangdong para el Cáncer, Centro Oncológico de la Universidad Sun Yat-Sen, Guangzhou, Guangdong, China: Weijing Zhang.
Escuela de Salud Pública, Universidad Sun Yat-Sen, Guangzhou, Guangdong, China: Ruihan Pu.
Centro de Cirugía Hepato-Pancreático-Biliar, el Primer Hospital Afiliado de la Universidad Sun Yat-Sen, Guangzhou, Guangdong, China: Shaoqing Huang.
Departamento de Cirugía Gastrointestinal, Hospital Xiang’an de la Universidad de Xiamen, Escuela de Medicina, Universidad de Xiamen, Xiamen, Fujian, China: Zhenshuang Du y Weiling He.
Autores: Jialing Gao. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Weijing Zhang. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Lulu Chen. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Ruihan Pu. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Shaoqing Huang. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Xiaoxue Wu. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Zhenshuang Du. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Weiling He. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Mei Song. Ver publicaciones del autor. Buscar autor en: PubMed, Google Scholar.
Contribuciones: Jialing Gao: Conceptualización, Metodología, Validación, Análisis formal, Investigación, Curación de datos, Redacción del borrador original, Revisión y edición. Weijing Zhang: Análisis formal, Investigación, Curación de datos. Lulu Chen: Análisis formal, Investigación, Curación de datos. Ruihan Pu: Análisis formal, Investigación, Curación de datos. Shaoqing Huang: Análisis formal, Investigación, Recursos, Curación de datos. Xiaoxue Wu: Análisis formal, Investigación, Curación de datos. Zhenshuang Du: Supervisión, Investigación. Weiling He: Recursos, Supervisión, Administración del proyecto, Adquisición de financiación. Mei Song: Conceptualización, Metodología, Validación, Análisis formal, Investigación, Recursos, Redacción del borrador original, Revisión y edición, Supervisión, Administración del proyecto, Adquisición de financiación.
Autores correspondientes: Correspondencia a Zhenshuang Du, Weiling He o Mei Song.
Declaraciones éticas
Conflicto de intereses: Los autores declaran no tener conflicto de intereses. Aprobación ética y consentimiento para participar: Todos los experimentos con animales fueron aprobados por el Comité de Ética del Departamento de Animales de Laboratorio de la Universidad Sun Yat-Sen (código: SYSU-IACUC-2024001971), y el protocolo animal se ajustó a las directrices institucionales del Comité de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Sun Yat-Sen. Todos los experimentos realizados con muestras de tumores fueron revisados y aprobados por el Comité de Ética Médica, el Primer Hospital Afiliado de la Universidad Sun Yat-Sen. Todos los pacientes cuyas muestras de tumor se utilizaron en el estudio dieron su consentimiento informado.
Información adicional: Nota del editor: Springer Nature se mantiene neutral con respecto a las reclamaciones jurisdiccionales en los mapas publicados y las afiliaciones institucionales.
Editado por: Profesor Youwei Ai
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Derechos y permisos: Acceso abierto: Este artículo se distribuye bajo una licencia Creative Commons Atribución 4.0 Internacional, que permite el uso, el intercambio, la adaptación, la distribución y la reproducción en cualquier medio o formato, siempre y cuando se dé el crédito adecuado al autor original y a la fuente, se proporcione un enlace a la licencia Creative Commons y se indique si se realizaron cambios. Las imágenes u otro material de terceros incluidos en este artículo están incluidos en la licencia Creative Commons del artículo, a menos que se indique lo contrario en una línea de crédito al material. Si el material no está incluido en la licencia Creative Commons del artículo y su uso previsto no está permitido por la regulación legal o excede el uso permitido, deberá obtener el permiso directamente del titular de los derechos de autor. Para ver una copia de esta licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/. Reproducciones y permisos. Acerca de este artículo. Citar este artículo: Gao, J., Zhang, W., Chen, L. et al. AURKA-mediated destabilization of SAPS3 drives ferroptosis evasion via 7-dehydrocholesterol biosynthesis in colorectal cancer. Cell Death Dis (2026). https://doi.org/10.1038/s41419-026-08549-9. Descargar cita. Recibido: 28 de octubre de 2025. Revisado: 05 de febrero de 2026. Aceptado: 03 de marzo de 2026. Publicado: 16 de marzo de 2026. DOI: https://doi.org/10.1038/s41419-026-08549-9.

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Artículo: AURKA-mediated destabilization of SAPS3 drives ferroptosis evasion via 7-dehydrocholesterol biosynthesis in colorectal cancer.

Autores: Gao J, Zhang W, Chen L, Pu R, Huang S, Wu X, Du Z, He W, Song M
Publicado: 2026-03-18
PMID: 41839844
Tratamientos: chemotherapy

Enlace: https://crcwarriors.org/article-detail.php?id=1719 | https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/41839844/

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